更新时间:2024-06-19
可溶性果胶(WSP)含量试剂盒果胶是构成细胞初生壁和中胶层的主要成分,主要由原果胶、果胶酸甲酯和果胶酸等 形式广泛分布于植物果实、根茎和叶中。
可溶性果胶(WSP)含量试剂盒
本试剂盒仅供科研使用 1 可溶性果胶(WSP)含量试剂盒说明书 (货号:WS4070F 分光法 48 样) 一、产品简介: 果胶是构成细胞初生壁和中胶层的主要成分,主要由原果胶、果胶酸甲酯和果胶酸等 形式广泛分布于植物果实、根茎和叶中。果胶和纤维素以及金属离子等物质相结合形成不 溶于水的原果胶,在果蔬成熟过程中转变为可溶性果胶,果实组织也变得软化、硬度下降。 本试剂盒先提取得到可溶性果胶(WSP),采用咔唑比色法测定可溶性果胶含量。果 胶水解成半乳糖醛酸,在硫酸溶液中与咔唑进行缩合反应,生成紫红色物质,经光谱扫描 该物质在 530nm 处有最大吸收峰,颜色深浅与果胶含量成正比,进而得可溶性果胶含量。 二、试剂盒组成和配制: 试剂名称 规格 保存要求 备注 试剂一 液体 1.5mL×1 支 4℃保存 标准品 粉剂 mg×1 支 4℃保存 若重新做标曲,则用到该试剂 三、所需的仪器和用品: 分光光度计、1mL 玻璃比色皿(1cm 光径)、水浴锅、可调式移液器、乙醇、浓硫酸、 研钵。 四、可溶性果胶(WSP)含量检测: 建议正式实验前选取 2 个样本做预测定,了解本批样品情况,熟悉实验流程,避免实验 样本和试剂浪费! 1、样本制备: ① 取 0.1g 组织(水分充足的样本可取 0.2g),加 2 mL 80%乙醇,研磨匀浆,95℃水浴 25min, 取出流水冷却后,8000rpm,25℃离心 10min,弃上清,留沉淀, ② 向沉淀中加入 1 mL 80%乙醇混匀,95℃水浴 25min, 取出流水冷却后,8000rpm,25℃ 离心 10min,弃上清,留沉淀, ③ 再向沉淀中加入 1 mL 蒸馏水混匀,50℃水浴 30min,流水冷却至室温,8000rpm,25℃ 离心 10min,弃沉淀,取上清液待测。 2、上机检测: ① 分光光度计预热 30min 以上,调节波长为 530nm,蒸馏水调零; ② 在 EP 管中依次加入: 试剂名称 (µL) 测定管 空白管 (仅做一次) 样本 105 蒸馏水 105 浓硫酸 630 630 可用封口膜缠紧,85℃水浴 15min 后, 流水冷却至室温。 试剂一 21 21 混匀,室温(25℃)暗处反应 30min(间隔 10min 混匀一次),全部液体转移至 1mL 玻璃比色皿中, 于 530nm 处读取吸光值 A,△A=A 测定-A 空白。 【注】:1、浓硫酸必须是分析纯级别,且不能长期开口放置,否则影响显色结果。另外浓硫酸具有 强腐蚀性,操作时需特别注意,85℃加热取出后冷却再打开盖子,以防液体飞溅烧伤。 2、显色反应必须在暗处反应,否则颜色很快消失或者变淡,影响吸光值。本试剂盒仅供科研使用 2 3、若 A 测定管值大于 1.8,可用蒸馏水稀释样本即待检测上清液,则稀释倍数 D 需代入公 式计算;或若 A 值再零附近可增加样本取样质量 W。 五、结果计算: 1、标准曲线方程:y = 2.6619x-0.0141;,x 为标准品浓度(mg/mL),y 是△A。 2、可溶性果胶含量(mg /g 重量) =[(ΔA+0.0141) ÷2.6619×V1]÷ (W×V1÷V)×D =0.37×(ΔA+0.0141)÷W W---样本重量,g; V---加入提取液体积,1mL; V1---加入样本体积,0.105mL; D---稀释倍数。 附:标准曲线制作过程: 1 制备标准品母液(0.5mg/mL):临用前向标准品中加入 2mL 蒸馏水(现配现用)。 2 把母液用蒸馏水稀释成六个浓度梯度的标准品:0,0.1,0.2,0.3,0.4,0.5. mg/mL。 也可根据实际样本来调整标准品浓度。 3 依据测定管的加样表操作,根据结果即可制作标准曲线。